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山楂中黄酮类化合物的测定方法概述 (5)(五)
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当向黄酮类化合物的甲醇(或乙醇)溶液中分别加入甲醇钠(NaOMe)、乙酸钠(NaOAc)、乙酸钠-硼酸(NaOAc-H3BO3)、三氯化铝或三氯化铝-盐酸(AlCl3/HCl)试剂能使黄酮的酚羟基离解或形成络合物等,导致光谱发生变化。据此变化可以判断各类化合物的结构,这些试剂对结构具有诊断意义,称为诊断试剂。
四、山楂中黄酮类化合物的测定实例
(一)高效液相色谱法
1.原理
植物类样品用石油醚脱脂后,经甲醇加热回流提取,以高效液相色谱法分离,在紫外检测器360nm条件下,以保留时间定性、峰面积定量。
2.仪器和试剂
(1)高效液相色谱仪(2)紫外检测器(3)层析柱(4)超声波清洗仪 (5)索氏提取器 (6)微孔过滤器(滤膜0.45um)(7)甲醇(色谱纯)(8)芦丁标准品(9)石油醚,盐酸,磷酸(分析纯)(10)去离子水(11)芦丁标准溶液:精确称取经105℃干燥恒重的芦丁标谁品15.0mg,加甲醇溶解并定容至100ml,配成150ug/ml的芦丁标准溶液
3. 操作步骤
(1)样品处理
1)固体样品:称取2.0g干燥的固体样品,研细,置于索氏提取器中,用石油醚(60~90℃)提取脂肪等脂溶性成分,弃去石油醚提取液,剩余物挥去石油醚,加人甲醇50ml和25%HC1 5ml,80℃水浴回流水解1h,取出后快速冷却至室温,转移至50ml容量瓶中,甲醇定容,经0.45um滤膜过滤,供分析用。
2)液体样品:准确吸取样品2.0ml,直接以石油醚萃取脱脂,挥去石油醚后, 以甲醇溶解并定容,经微孔滤膜(0.45um)滤过后供测定用。
(2)色谱分离条件
色谱柱:CLC-ODS,6mm×150mm,5um;
流动相:0.3%磷酸水溶液:甲醇(V:V)=40:80,临用前用超声波脱气; 流 速:lml/min; 柱 温:40℃; 检测波长:360nm; 灵敏度:0.02AUFS; 进样量:20ul。
(3)样品测定:准确吸取样品处理液和标准液各10ul,注入高液相色谱仪进行分离,以其标准溶液峰的保留时间定性,以其峰面积计算出样品中总黄酮的含量。4、结果计算
(二)分光光度法
1.原理 黄酮类化合物是具有苯并吡喃环结构的一类天然化合物的总称,一般都具有4位羰基,且呈现黄色。黄酮类化合物的3—羟基、4—羟基或5—羟基、4-羰基或邻二位酚羟基,与铝盐进行络合反应,在碱性条件下生成红色的络合物。
本方法对样品中黄酮类化合物进行提取纯化后,用分光光度法于510nm波长下测定其吸光度,与芦丁标准品比较,进行待测物中总黄酮的定量测定。 2.仪器和试剂 (1)722分光光度计 (2)索氏提取器
(3)真空泵,盐基交换管等。 (4)恒温水浴,分液漏斗。 (5)芦丁标准品 (6)亚硝酸钠,硝酸铝,氢氧化钠(分析纯)。 (7)氯仿,无水乙醇,甲醇(分析纯)。 (8)5%香草醛溶液:称取5g香草醛,加冰乙酸溶解并定容至100ml。 (9)聚酰胺树脂 (10)去离子水。
3.操作步骤 (1)样品处理
1)固体样品:称取1~2g干燥的固体样品,用滤纸包紧,置于索氏提取器中,加入50~100ml 70%乙醇溶液浸润后,在80℃水浴下回流3h,至提取液无色为止。粗提液冷却后,减压抽滤,并用少量25%乙醇溶液洗涤滤渣,合并滤液。在50℃下减压蒸馏,除去其中的乙醇,直至索氏提取器内溶液呈无醇味。倒出容器内溶液,用30ml热水分3次洗涤,抽滤后,将滤液倒入分液漏斗中,以75ml 氯仿分3次萃取脱脂,待完全分层后,收集各次下层水溶液并定容至50ml。
称取1~2g经预处理的聚酰胺树脂粉末,湿法装柱,用水饱和。吸取上述脱脂后的水溶液1~2ml,沿层析柱漫漫滴人柱内,放置一定时间,待测液被充分吸附后,用70%乙醇或甲醇洗脱,流速为1.0ml/min,至流出液基本无色,一般收集10ml即可。上述洗出液用洗脱剂定容后即可用于测定。
2)液体样品:准确吸取1.0ml样品,定容至50ml后,直接以75ml 氯仿分3次萃取脱脂,其余步骤同上。
(2)标准曲线的绘制:准确吸取芦丁标准溶液0、0.50、1.00、2.00、3.00、⒋00ml(相当于芦丁0、75、150、300、450、600ug),移入10ml刻度比色管中,加入30%乙醇溶液至5ml,各加5%亚硝酸钠溶液0.3ml,振摇后放置5min,加入10%硝酸铝溶液0.3ml摇匀后放置6min,加1.0mol/L氢氧化钠溶液2ml,用30%乙醇定容至刻度。摇匀,放置15min,于510nm波长处测定吸光度,以零管为空白,以芦丁含量(ug)为横坐标,以吸光度为纵坐标绘制标准曲线,计算相关系数(r)。
(3)样品测定:根据样品中总黄酮含量高低,取适宜体积待测液,按标准曲线制备操作步骤于510nm处进行吸光度的测定(样液如有沉淀,应过滤后测定)。
4.结果计算 根据标准工作曲线,求出相当于样品吸光度的芦丁含量,按下式求出总黄酮含量
(三)紫外光分光亮度法测定
(1)对照品溶液制备
精密称取槲皮素对照品10.0 mg,置100 mL容量瓶中,加入95%乙醇50 mL溶解,再以50%乙醇稀释至刻度,摇匀,即得0.1 mg/mL的对照品溶液,也即标准溶液。
(2)供试品溶液制备
精密称取105℃干燥2 h的山楂约6.5015 g,置索氏提取器中,加入60%乙醇130 mL,回流提取1.5 h。将提取液定量转移至250 mL容量瓶中,补加蒸馏水至刻度,摇匀,作为 供试品溶液。
(3)测定最大吸收波长
精密量取对照品溶液0.0、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0 mL,分别置于10 mL容量瓶中。分别加入50%乙醇使成5 mL;精密加入5%NaNO2溶液0.3 mL,摇匀,放置6 min;加入10%Al(NO3)3溶液0.3 mL,摇匀,放置6 min;加入1 mol/L NaOH溶液4 mL;分别用50%乙醇稀释至刻度,摇匀,放置15 min。以第1瓶和第4瓶扫描最大吸收波长,第1瓶为空白。结果见图1
由图1可知,λ=315 nm为最大吸收波长。 1.3.4绘制标准曲线
于最大吸收波长315 nm处分别测其吸光度,以对照品浓度为横坐标,以吸收度为纵坐标,绘制标准曲线,并计算回归方程。结果见图2。
结果表明,槲皮素在0.000252~0.0340 mg·mL-1范围内呈良好的线性关。
参考文献
[1]侯宽照主编.中国种子植物科属词典[M].北京.科学出版社,1958:115.
[2]李建华,胡金林.山楂的药理作用与临床应用[J].中国药物滥用防治杂志,2011,17(7):334-338.
[3]李晓玲,张小民.山楂叶的营养及开发价值[J].山西林业,2005(1):21-22.
[4]石岩鹏,丁杏苞.山楂化学成分的研究[J]中草药.2000,31(3):173-174.
[5]王小宁,杨黎彬,刘少静.正交实验优化山楂总黄酮提取工艺[J].应用化工,2012,41(11):1963-1964.
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